date:2023-05-18 13:40:31
免疫熒光實驗
ibidi提供了一種簡單且經(jīng)濟高效的方案，使用ibidi3孔可移除腔室載玻片（80381）對細胞進行培養(yǎng)、固定和染色。培養(yǎng)MCF-7細胞并用福爾馬林溶液固定。細胞核用DAPI染色，肌動蛋白骨架用DYE-490鬼筆肽染色。可通過使用圓形的15mm蓋玻片來減少所需的染色溶液的量。利用一級和二級抗體染色，通過免疫細胞化學可以探測其他細胞內(nèi)結(jié)構(gòu)。
實驗使用的材料：
所使用的材料和試劑如下所示。此外，還需要配備一臺有適當濾光片組的倒置或正置熒光顯微鏡。
·3孔可移除腔室載玻片（ibidi，80381）
·3孔可移除培養(yǎng)專用圓形15mm蓋玻片及配套工具，（ibidi，10815）
·細胞：MCF-7（CLS，300273）
·細胞培養(yǎng)基
·細胞培養(yǎng)試劑
·PBS
·福爾馬林中性緩沖液，10％（Sigma，HT5011）
·染色試劑
o DAPI（Sigma，D954）
o DYE-490鬼筆環(huán)肽（Dynomics，490-33）
·封片劑：FluoroshieldTM（Sigma，F(xiàn)6182）
實驗方案
細胞培養(yǎng)，固定，染色和成像觀察--都是在一個開放型小室中搞定：）
第1步：
必須在預實驗中確定細胞系的正確接種濃度。根據(jù)您的細胞類型，用2-6x104細胞/ml在2-3天內(nèi)產(chǎn)生匯合的單層。
1. 在無菌條件下，打開3孔可移除腔室載玻片（ibidi，80381）包裝。
2. 像往常一樣對細胞進行胰蛋白酶化和計數(shù)。MCF-7細胞濃度為3×104細胞/ml 。
3. 將1100μl細胞懸浮液加入腔室的每個孔中。避免搖晃，因為這會導致細胞分布不均勻。為獲得更均勻的細胞分布，請使用3孔可移除培養(yǎng)專用圓形15mm蓋玻片。
4. 用配套的蓋子蓋住。在37°C和5％CO2下培養(yǎng)。
5. 細胞至少培養(yǎng)24小時，或直到建立融合的單層。
第2步：
固定是染色程序的第一步。目的是將細胞、細胞結(jié)構(gòu)或組織維持在當前狀態(tài)，并通過化學試劑在較長時間內(nèi)保存制劑。
1.小心地抽吸細胞培養(yǎng)基。
2.用PBS洗兩次。
3.加入1100μl福爾馬林溶液。
4.室溫下孵育30分鐘。
5.小心地抽吸福爾馬林溶液。
6.用PBS洗滌三次
第3步：
應根據(jù)感興趣的細胞結(jié)構(gòu)選擇染色試劑。在該方案中使用DAPI和DYE-490鬼筆環(huán)肽染色MCF-7細胞的細胞核和肌動蛋白骨架。
1.準備你的染色溶液：
· PBS
· DYE-490鬼筆環(huán)肽（每單元/玻片，50 μl/單元）
· DAPI 1μg/ml
2.小心吸出PBS。
3.用蓋玻片拾取工具抓取15毫米的圓形蓋玻片，并將其放置在腔室孔內(nèi)的圓形邊緣上。
4.將移液管尖端插入其中一個角槽中，將150μl染色液移入孔中。
5.在室溫下避光孵育30分鐘
第4步：
染色后清洗樣本可最大限度地減少背景信號
1.通過在一個角槽中添加950μl緩沖液來移除蓋玻片。
2.用Coverslip Pick-Up Tool蓋玻片拾取工具或鑷子抓取漂浮的蓋玻片，將其從孔中取出。
3.如有必要，重復洗滌步驟，抽吸緩沖液并在每孔中移液1100μl緩沖液。圓形的15毫米蓋玻片無需額外的洗滌步驟。
第5步：
從一個邊緣開始，用手或用鑷子小心地取下硅膠墊圈。該步驟應以緩慢，穩(wěn)定的進行，以避免損壞細胞層。
第6步：
完成染色程序后，必須在用顯微鏡成像之前封固樣品。該步驟還可防止樣品脫水。
1.將載玻片側(cè)面在干凈的實驗室濕巾上輕敲，去除樣品中多余的介質(zhì)。
2.將封固劑涂在樣品上。用24 x 60毫米的蓋玻片覆蓋安裝好的樣品，小心地將蓋玻片放到封片劑上，以避免夾住任何氣泡。
Tip：建議使用硬化封片劑，如FluoroshieldTM (Sigma-Aldrich), Vectashield? (Vector Laboratories Inc.), or ProLong Antifade? (ThermoFisher Scientific)。
3.等封片劑固定好。
第7步：顯微觀察
使用可移除3孔腔室載玻片培養(yǎng)MCF-7細胞。用DAPI和染料490對細胞結(jié)構(gòu)進行染色。圓形15mm蓋玻片減少了所需的染色溶液的量。用硬化封片劑安裝載玻片，可使樣品長期保存。
圖1 MCF-7細胞的肌動蛋白骨架用DYE 490鬼筆肽染色（左上），細胞核用DAPI染色（右上）。下圖顯示了合成圖像，細胞核為藍色，肌動蛋白骨架為綠色。（比例尺：100μm）
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